摘要
本研究以五个辣椒(Capsicum annuum L.)品种(系)为材料，针对不同基因型、苗龄、外植体种类、激素组合等因素对辣椒植株离体再生的影响进行了较为系统的研究，建立了辣椒高效植株再生体系。同时以辣椒枯萎病原菌培养滤液作为粗毒素，对毒素的生物活性进行了测定，研究了毒素对辣椒种子发芽、幼苗生长及胚根伸长的毒害作用。在此基础上，本研究以辣椒枯萎病粗毒素为选择剂，通过连续筛选，建立了辣椒抗枯萎病体细胞变异无性系筛选体系，获得了一批抗枯萎病的辣椒体细胞突变体植株。本研究获得了以下结果：
1．从“农城椒2号”、“农城椒3号”、“0127”、“0159”、“0171”等五个辣椒品种(系)中筛选出“农城椒2号”、“0127”、“0171”三个再生能力较强的基因型。确定了辣椒离体再生最适外植体为子叶，最适苗龄为12～14d。筛选出高效不定芽分化培养基(MS+3％蔗糖+0.6％琼脂+5.0mg／L BA+0.5～1.0mg／L IAA)，不定芽诱导率可达98％。诱导出的不定芽转入MS+3％蔗糖+0.6％琼脂+3.0mg／L BA+1.0mg／L IAA+2.0mg／L GA_3+10.0mg／L AgNO_3芽伸长培养基，不定芽伸长率最高可达47.1％。不定芽伸长后在MS+3％蔗糖+0.6％琼脂+0.2mg／L IAA+0.1mg／L NAA生根培养基上诱导不定根。待其长成发达根系后移栽大田成苗，建立了辣椒高效植株再生体系。
2．用查彼克液体产毒培养基培养辣椒枯萎病病原菌，取其培养滤液作为粗毒素，测试了毒素液对“农城椒2号”、“0127”、“0171”三个基因型种子发芽、幼苗生长、胚根伸长的作用。结果表明，辣椒枯萎病病原菌粗毒素具有一定的热稳定性，能够强烈抑制辣椒种子发芽，抑制辣椒幼苗生长，对种子胚根的伸长也具有毒害作用，且随着毒素处理浓度的升高而增强。在同一毒素浓度下，不同品种(系)受粗毒素抑制程度有所不同，毒素对“0127”幼苗生长的抑制作用显著强于其对“农城椒2号”、“0171”的抑制作用，说明“0127”对辣椒枯萎病的抗性在一定程度上比“农城椒2号”、“0171”的抗性弱。
3．用“农城椒2号”、“0127”的子叶作为外植体诱导产生愈伤组织，以辣椒枯萎病粗毒素作为选择剂，筛选辣椒抗枯萎病细胞变异无性系。结果表明：不同辣椒品种(系)愈伤组织对毒素有不同的忍耐力，辣椒对枯萎病的抗性在一定程度上能在离体条件下表现出来：辣椒枯萎病病原菌粗毒素对辣椒子叶愈伤组织诱导、愈伤组织的生长增殖及不定芽分化具有显著的抑制作用，随着粗毒素浓度的增加，抑制作用增强；辣椒枯萎病病原菌粗毒素对不定芽分化、生长的毒害作用更强。
4．本研究共获得辣椒抗枯萎病再生植株32株，其细胞无性系经抗毒素特性鉴定分析，表明经过粗毒素连续筛选得到的细胞变异无性系对辣椒枯萎病具有稳定抗性。
This study established the program of a high efficient in vitro regeneration procedure of five pepper cultivars. The effect of genotypes, explants, hormones, and days of seedlings on the tissue culture in pepper was investigated systematically. Furthermore, the study had a research on the degree of damage of the crude toxin derived from capsicum wilt pathogen to the germination of seeds, growth of seedlings, and elongation of radicel in pepper. On the basis of these steps, the study selected some cell mutant lines resistant capsicum wilt in pepper by use of the crude toxin, and obtained several plants regenerated in vitro. Some conclusions were drawn as following.
1. Three cultivars of pepper (Capsicum annuum L.), 'Nongchengjiao 2', '0127', and '0171', were screened out of five cultivars for their high capacity of regeneration. The experimental results showed that the cotyledon explants taken from 12-day-old seedlings displayed the highest shoot-buds regeneration capacity. As far as culture medium was concerned, the buds induced well on MS+3% sucrose+0.6% agar + 5. 0mg/L BA+0.5-1.0mg/L IAA, which made the shoot buds differentiation frequency of 98%. Moreover, 45.7% of induced buds elongated well on the medium of MS+3% sucrose+0.6% agar+3.0mg/L BA+1.0mg/L IAA+2.0mg/L GA3+10.0mg/L AgNO3. The regenerated plants were transplanted into nutrient soil and developed into normal plants. So, an efficient program for plant regeneration from explants of pepper had been developed.
2. The crude toxin was obtained by means of liquid culture of the capsicum wilt pathogen with Czapek's liquid medium. Using the crude toxin, the study investigated the effect of capsicum wilt on the germination of seeds, the growth of seedlings, and the elongation of radicel in three cultivars of pepper, 'Nongchengjiao 2', '0127', and '0171'. The experimental results showed that the crude toxin of capsicum wilt pathogen had the capacity of thermal stability, and can not only extremely inhibit both the germination of seeds and the growth of seedlings, but also do great harm to the elongation of radicel. Under the same concentration of crude toxin, the degree of damage was different from varied genotypes. The crude toxin inhibit the growth of seedlings of cultivar '0127' more extremely than that of cultivar 'Nongchengjiao 2' and '0171', which indicated that the resistance of cultivar '0127' to capsicum wilt was less than cultivar 'Nongchengjiao 2' and '0171' to some extent.
3. Using crude toxin, some cell mutant lines resistant to capsicum wilt were filtrated in vitro by means of callus induced by cotyledon explants in two pepper cultivars, 'Nongchengjiao 2' and '0127'. The experimental results meant that the resistance to capsicum wilt can be showed in vitro because of different capacity of disease resistance between varied genotypes. The crude toxin had sharply negative effect on both the inducement and the growth of callus. Also, it done great harm to the regeneration of buds differentiated from the callus. Compared with the degree of the damage to callus, the crude toxin inhibited both the differentiation frequency and the growth of the buds more strongly.
4. Several plants resistant to capsicum wilt were obtained in vitro. It was proved that their cell mutant lines had a stable resistibility to capsicum wilt through the identification and analysis.
引文
[1] 安美玉等，尖孢镰刀菌(Fusarium oxysporum Schl．在液体(表层)培养时的产毒条件[J]，微生物学通报，1982，9(2)：73-75
[2] 别之龙、刘佩瑛，辣椒的离体培养与遗传转化[J]，长江蔬菜，1996，(8)：1-5
[3] 曹冬孙、贾士荣，青椒子叶培养及植株再生[J]，园艺学报，1993，20(2)：171-175
[4] 曹有龙、贾勇炯、赵军、陈晓斌、陈放，应用组织培养技术筛选枸杞抗根腐病变异体的研究[J]，植物病理学报，1999，29(2)：163-168
[5] 陈静娴、聂凡，辣椒子叶培养及其植株再生的研究[J]，安徽农业科学，1990，(3)：255-257
[6] 陈绍江，植物病原菌毒素在作物抗病育种中研究进展[J]，作物杂志，1995(3)：6-7
[7] 陈晓梅、郭顺星，植物抗病性物质的研究进展[J]，植物学通报，1999，16(6)：658-664
[8] 陈耀锋、韩德俊、李春莲、任惠利，普通小麦抗赤霉细胞工程育种研究 Ⅰ．抗镰刀菌毒素细胞变异系的分离[J]，农业生物技术学报，1998，6(3)：217-221
[9] 陈耀锋、韩德俊、闵东红、任惠利、李春莲，小麦单倍体无性系抗镰刀菌毒素细胞系的筛选[J]，西北农业大学学报，1995(2)：135-139
[10] 陈耀锋、李春莲、韩德俊、任惠利，镰刀菌毒素在小麦组织离体培养中的类激素活性[J]，西北农业学报，1997，6(4)：22-35
[11] 陈耀锋、朱庆麟、杨祥，镰刀菌粗毒素的特性及对小麦幼胚愈伤组织生长的影响[J]，西北农业学报，1992，1(3)：81-84
[12] 陈英、陆维忠、郑企成，植物体细胞无性系变异与育种，南京：江苏科技出版社，1991
[13] 仇元、段应科，棉花枯萎病菌菌系培养滤液致萎力测定[J]，植物病理学报，1963，6(2)：216-223
[14] 刁现民、孙敬三，植物体细胞无性系变异的细胞学和分子生物学研究进展[J]，植物学通报，1999，16(4)：372-377
[15] 董春枝、姜春晓、冯兰香、郭家珍、甜(辣)椒导入CMV卫星RNA互补DNA的植株再生[J]，园艺学报，1992，19(2)：184-186
[16] 董金皋、史有艳、姜虎山，真菌毒素生物测定方法研究概况 Ⅱ：细胞及细胞水平的生物测定[J]，1993，16(3)：94-98
[17] 董金皋、朱唏，真菌毒素生物测定方法研究概况 Ⅰ：植株和组织器官水平的生物测定[J]，河北农业大学学报，1992，15(4)：99-103
[18] 葛汇波，生物技术在园艺植物品种改良中的应用[J]，生物技术，1997，7(2)：43-46
[19] 葛扣麟、T.Sasakuma、M．Tanaka，辣椒属不同野生种和栽培种的组织培养与植株再生的研究[J]，植物学报，1989，31(2)：962-965
[20] 葛起新，浙江植物病害志，上海，上海科技出版社，1991，106
[21] 顾本康、李经仪，顾萍，棉花枯萎病菌的寄生植物初步研究[J]，江苏农业科学，1979，2：33-35
[22] 郭丽娟、姚庆筱、张春等，利用细胞工程技术筛选小麦抗病新种质的研究[J]，遗传学报，1996，23(1)：40-47
[23] 韩庆新、辛惠普，Fusarium oxysporum 毒素对大豆致病作用的初步研究[J]，黑龙江八一农垦大学学报，1985，1：19-37
[24] 郝峥嵘、戚家华、王子霞等，辣椒子叶的离体再生培养[J]，新疆农业科学，1993，(2)：121-122
[25] 何晓明、巩振辉、王鸣、常彩涛，辣椒抗病育种的进展与展望[J]，中国蔬菜，1995，(2)：55-59
[26] 何晓明、王鸣、王喆之，辣椒叶片离体培养与植株再生[J]，西北农业大学学报，1996，24(1)：93-96
[27] 何晓明、王鸣、王喆之，辣椒子叶原生质体培养和植株再生[J]，园艺学报，1997，24(3)：298-300
[28] 何晓明、王鸣、王喆之，辣椒子叶、下胚轴离体培养与植株再生[J]，西北植物学报，1995，15(7)：64-67
[29] 巩振辉编著，辣椒生产新技术，农村实用新技术丛书，西安地图出版社，2000，6
[30] 黄大防等，小麦根腐病变异体细胞选择的初步研究[J]，植物病理学报，1987，17(3)：176-180
[31] 黄立志、戚佩坤，玉林地区辣椒枯萎病的病原菌鉴定[J]，广西农业大学学报，1994，13(4)：348-352
[32] 黄绍岗，辣椒枯萎病[J]，广西植保，1994，(3)：27-28
[33] 康绍兰、董金皋、张汀等，诱发小麦抗根腐病突变体的研究Ⅱ影响小麦根腐菌致病毒素作用的因素与生物测定初报[J]，河北农业大学学报，1991，14(2)：54-59
[34] 康绍兰等，诱发玉米抗小斑病突变体的研究[J]，河北农业大学学报，1986，9(3)：7-12
[35] 孔平，抗病突变体筛选技术及其在蔬菜上的应用[J]，中国蔬菜，1992，(4)：51-54
[36] 匡开源、陆仕华、史士英、张树荣、黄敬坚，镰刀菌毒素的研究[J]，真菌学报，1984，4(3)：193-196
[37] 黎定军、张宝玺、赵开军、谢丙炎、罗宽，辣椒子叶高效植株再生体系的建立[J]，园艺学报，2002，29(1)：25-29
[38] 李朝灿、甘代耀，水稻抗稻瘟病突变体离体筛选研究初报[J]，福建农业科技，1985，(6)：10-13
[39] 李海民、陈英，通过花药培养筛选水稻耐镉突变体[J]，遗传学报，1987，14(1)：42-48
[40] 李明远、李固本，裘季燕，北京蔬菜病情志，北京，北京科技出版社，1987，115
[41] 李学宝、陈光荣、金波，辣椒下胚轴离体培养的研究[J]，华中师范大学学报(自然科学版)，1995，29(3)：367-371
[42] 梁力哲，辣椒种生镰刀菌及其病理学意义的研究[J]，植物病理学报，1990，20(2)：117-121
[43] 林定波，体细胞无性系变异在果树抗性生理及育种研究中的进展[J]，沈阳农业大学学报，1997-10，28(4)：326-331
[44] 凌定厚等，运用植物毒素离体筛选水稻抗胡麻斑病种质的研究[J]，遗传学报，1986，13(3)：194-198
[45] 刘成运、李中奎、权明清等，水稻抗白叶枯病菌毒素细胞无性变异系的初步筛选[J]，武汉植物学研究，1994，12(1)：1-6
[46] 刘文萍、刘丽艳、吕晓波、南相日，稻瘟病菌粗毒素的制备及其致病力的测定[J]，黑龙江农业科学，1997，(6)：15-17
[47] 刘选明、徐合奎、周朴华，小麦体细胞无性系的建立及抗赤霉病突变体的诱导[J]，湖南农业大学学报，1997，23(3)：205-209
[48] 刘勇、刘红丽、曾正宜，利用小孢子培养技术筛选油菜抗菌核病材料[J]，西南农业学报，1997，10(植保专辑)：108-112
[49] 陆维忠、陈顺和、沈晓蓉、周朝飞、章静娟、王裕中，细胞工程在小麦抗赤霉病育种中的利用[J]，江苏农业学报，1998，14(1)：9-14
[50] 陆维忠、蒋宁、周楠，小麦抗赤霉病无性系变异的研究与应用[J]，农业生物技术学报，1995，3(2)：7-11
[51] 孟昭赫、张国柱、宋圃菊，《真菌毒素研究进展》，人民卫生出版社，1979，北京
[52] 孟征、陈英，抗S-(2-氨乙基)L-半光氨酸(AEC)水稻突变体的筛选[J]，遗传学报，1987，
14(2)：100-106
[53] 欧刚叶新、李中奎、刘成远，抗白叶枯病菌水稻体细胞无性系变异体筛选后代的生理生化特性[J]，植物病理学报，2000．30(1)：43-47
[54] 祁高富、杨斌、叶建仁，植物病原真菌毒索研究进展[J]，南京林业大学学报，2000，(2)：33-38
[55] 沈火林、王志源、蒋健箴、任中华、王德恒，辣椒的组织培养与植株再生[J]，北京农业大学学报，1993，19(2)：47
[56] 史建荣、何晨阳、王金生、植物病原菌致病性的分子基础解析[J]，江苏农业学报，1998，14(4)：240-245
[57] 黄秀琴、吴晶琼，镰刀菌毒素[J]，微生物学通报，1994，21(3)：176-179
[58] 宋再华、彭守华、苘爱兰，体细胞无性系变异及变异频率[J]，莱阳农学院学报，1997，14(2)：126-129
[59] 孙光祖、陈义纯、张月学、王广全、唐凤兰、李忠杰、阎文义，辐射诱变与离体培养相结合选育小麦抗赤霉病突变体的初步研究[J]，核农学通报，1993，14(5)：205-209
[60] 孙杰，棉花黄萎病毒素在早期抗病性检测中的应用研究[J]，石河子大学学报(自然科学版)，1998(S1)：52-57
[61] 孙立华、余建民、吕学锋，用组织培养法筛选水稻抗叶枯病突变体，遗传学报，1986，13(3)：188-193
[62] 孙顺娣，茄病镰刀菌毒素的研究 Ⅱ 毒素与豌豆品种抗病性的关系[J]，甘肃农业大学学报，1994，29(3)：245-249
[63] 孙顺娣，茄病镰刀菌毒素的研究Ⅰ．毒素的分离、鉴定及生物测定[J]，甘肃农业大学学报，1994，29(2)：140-144
[64] 孙顺娣，豌豆不同品种对茄病镰刀菌感病性及对其毒素敏感性之间的相关性[J]，植物病理学报，1994，25(2)：155-160
[65] 田维平、塔娜、刘正坪、王若菁、卫淑银，茄黄萎病菌粗毒素提取及氨基酸成份分析[J]，内蒙古农业大学学报(自然科学版)，1998(2)：45-48
[66] 童蕴慧、徐敬友、袁素玲，番茄早疫病菌培养滤液的毒性及不同品种对滤液的敏感性[J]，江苏农业学报，1997(4)：23-26
[67] 王东凯、郭殿京，蔬菜作物抗病基因工程进展[J]，生物技术，1997，7(5)：4-6
[68] 王贺祥、徐孝华，棉花枯萎病菌镰刀菌酸的产生和致病力的关系[J]，植物病理学报，1988，18(2)：99-102
[69] 王金陵、许文耀、王允义，稻瘟病菌粗毒素的制备及其对水稻毒性的测定[J]，福建农学院学报，1988，14(4)：318-322
[70] 王兰兰、王鸣，辣椒种质资源苗期枯萎病抗性研究[J]，园艺学报，1991，18(2)：153-158
[71] 王荔、罗文富、杨艳琼、杨德，运用致病毒素筛选抗烟草黑胫病细胞突变体Ⅰ抗毒素愈伤组织的有效筛选[J]，云南农业大学学报，1999(1)：34-38
[72] 王荔、杨艳琼、杨德、罗文富，运用致病毒素筛选抗烟草黑胫病细胞突变体 Ⅱ 抗毒素愈伤组织的再生植株及其后代的抗病性鉴定[J]，云南农业大学学报，1999，(3)：43-46
[73] 王玉文、杨美珠、潘乃燧、陈章良，甜椒的离体再生及基因转化[J]，植物学报，1991，33(10)：780-786
[74] 王玉英、郭仲琛、李春玲、蒋中仁，甜椒花药培养的初步研究[J]，园艺学报，1980，7(1)：33-38
[75] 王喆之，张火力等，灯笼果组织培养的研究[J]，西北植物学报，1991，11(1)：44-49
[76] 韦小敏、季良越、胡言民、孙晓丽，玉米耐盐愈伤组织变异体的筛选初报[J]，河南农业大学
学报，2000，34(4)：324-328
[77] 吴蔼民、夏正俊、傅正擎、顾本康，培养条件对棉花黄萎病菌毒素产生的影响[J]，江苏农业学报，1999(2)：67-70
[78] 吴鹤鸣、赵华侖、辣椒茎、叶离体培养中生长调节剂的作用[J]，江苏农业学报，1992，8(4)：48
[79] 吴畏等，小麦长蠕孢菌毒素[J]，真菌学报，1989，8(1)：70
[80] 吴沿友、罗鹏，甘蓝型油菜抗HYP突变体的筛选及鉴定[J]，中国油料作物学报，1998，20(2)：10-14
[81] 谢丙炎、朱国仁，辣椒疫霉致病毒素[J]，菌物系统，1997，16(4)：274-280
[82] 杨建伟、王红卫、阎光兰、秦毓茜，三樱椒子叶愈伤组织的诱导及分化[J]，吉林农业大学学报，2000，22(2)：51-55，61
[83] 姚明镜、张献龙、刘金兰、孙济中，陆地棉黄萎病体细胞抗性突变体的筛选研究[J]，棉花学报，1995，(1)：
[84] 叶志彪、李汉霞、张健、荆玉祥，辣椒转基因植株再生[J]，植物学报，1993，35(增刊)：88-93
[85] 殷丽青、陈全庆、刘保申，稻瘟病菌及其粗毒素对水稻愈伤组织毒害的初探[J]，上海农学院学报，1994，12(1)：52-55
[86] 余小林、李乃坚、黄自然等，辣椒子叶离体培养和植株再生体系的建立[J]，园艺学报，2000，27(1)：42-46
[87] 俞大绂，中国镰刀菌菌种的初步名录[J]，植物病理学报，1955，1(1)：4
[88] 张举仁、高树芳、杨爱芳、于家驹，利用组织培养技术选育玉米抗小叶斑病突变体[J]，生物工程学报，1998，14(4)：456-459
[89] 张树荣、黄敬坚、匡开源、陆仕华、史士英、张沪同，镰刀菌毒素的研究Ⅱ.T-2毒素的提取、纯化及结构鉴定[J]，真菌学报，1985，4(4)：255-259
[90] 张喜春、Lutova L．A、韩振海、王志源，利用细胞筛选方法获得西红柿抗晚疫病突变体的研究[J]，园艺学报，2000，27(5)：377-379
[91] 张献龙、姚明镜、刘金兰、孙济中，棉花枯萎病菌毒素对种子发芽和组织生长的毒害作用[J]，华中农业大学学报，1993，12(4)：317-322
[92] 章元寿，用棉花黄萎病毒素检测棉花抗病性的研究[J]，植物保护，191，17(4)：2-4
[93] 王得元、何晓明、王鸣蔬菜生物技术概论，蔬菜高新技术丛书，中国农业出版社，2002，北京
[94] 赵小明、杨家荣、吕金殿、甘莉，棉花黄萎病菌毒素对根生长及根冠细胞毒害作用研究[J]，西北农业大学学报，1999，27(6)：177-181
[95] 郑祖玲、诸启人、张承妹，利用水稻花培筛选稻瘟病抗性突变体[J]，植物学通报，1984，2(4)：41-43
[96] 周淼平、陆维忠，植物几丁质酶及其在抗真菌基因工程中的应用[J]，江苏农业学报，1998，14(3)：183-187
[97] 周楠、崔叶龙、陆维忠，抗小麦赤霉病体细胞突变体筛选研究[J]，农业生物技术学报，1993，9(2)：22-27
[98] 周荣仁、佘叔文，烟草耐盐愈伤组织变异体对盐渍的适应性[J]，植物生理学报，1993，19(2)：188-194
[99] 周新民、陆帼一，原生质体在作物改良上的应用[J]，西北农业学报，1997，6(1)：88-91
[100] 周钟信、张宗江、刘艳军、江倩云、米景九，辣椒子叶离体培养再生植株[J]，华北农学报，1994．9(2)：59-63
[101] 朱至清，体细胞无性系变异与植物改良[J]，植物学通报，1991，8，增刊：1-8
[102] 邹继军、杨庆凯，病原菌毒素在作物抗病育种中的应用[J]，黑龙江农业科学，1997，(6) ：28-30
[103] Agrawal S, N.Chandra.Differentiation of multiple shoot buds and plantlets in cultured embryos of Capsicum annuum L.van mathania.Curr.Sci.1983, 52:645-646
[104] Agrawal S, N.Chandra, et al.Plant regeneration in tissue cultures of pepper (Capsicum annuum L. var.mathania.), Plant Cell Tiss.Org.Cult., 1989, 16:47-55
[105] Anderson P.C.et al.In:6th Intl.Congress of Plant Tissue and Cell Culture, Abstra, IAPCT, Univ. Minnesota, 1986,437
[106] Arroyo R, Revilla M A.In vitro plant regeneration from cotyledon and hypocotyls segments in two ball pepper cultivars.Plant Cell Reports, 1991, 10:414-416
[107] Behnke M.Selection of potato callus for resistance to culture filtrates of phytophthora infestance and regeneration of resistance plant.Theor Appl Genet, 1977:(55) :67-71
[108] Berlyn M B.Theo Appl Genet, 1982, 63:57-63
[109] Bingham E T, McCoy J T.Somaclonal variations in alfalfa.Plant Breeding Rev, 1986, 4:123-152
[110] Booth C.The Genus Fusarium.CMI Key Surrey, England, 1971
[111] Brettell RIS, Pallorta M A, Gustafson J F et al.Variation at the Norloci in triticale derived from tissue culture.TAG., 1986,71:637-643
[112] Brown P T H.Large F D.Kranz E et al.Mol Gen Genet, 1993,237:311-317
[113] Burmeister, H.R.and hesseltine, C.W.Biological assays for two mycotoxins produced by Fusarium tricinctum.Appl.Microbiol.1970, 20:437-440
[114] Burr B and Burr A.In:Plant Transposable Elements.Nelson D ed.Plenum Press, New York, 1988,317
[115] Carlson P.Methionine sulfoximine resistant mutants of tobacco.Science, 1973, 180:1366-1368
[116] Chaleff R.S.In:Genetics of Higher Plants-Applications of Cell Culture (Newth, R.D et al.),Cambridge Univ.Press, 1981, 41
[117] Chandler S F, Mandal S F, Thorpe T A.Variation from plant tissue cultures.Biotechnological application to improving Salinity tolerance.Biotech adv, 1986, 4:117-135
[118] Claydon N, Grove J F.In the Applied Mycology Fusarium (edited by M.O.Moss and J.E. Smith), Cambridge:Cambridge University Press, 1984:117-128
[119] Claydon N, Grove J F.People M.Journal of invertebrate Pathology, 1977, 30:216-223
[120] Claydon N, Grove J F.People M.Journal of invertebrate Pathology, 1979, 33:364-370
[121 ] Cole R J, Dorner J W, Cox R H.Journal of Natural Products, 1981,44:324-330
[122] Crawford R F.The etiology and control of chile wilt produced by Fusarium annuum. New Mexico Agr Exp Sta Tech Bull, 1934, 223:1-20
[123] Dennis E S, Gerlach W L, Pryor A J et al.molecular analysis of the alcohol dehydrogenase (Adh) gene of maize.Nucleic Acid Res.1984, 12:3983-4000
[124] De Paepe R, Part D, Huquet T.Plant Sci Lett, 1982, 28:11-28
[125] Devaux P, Kilian A, Kleinhofs.Mol Gen Genet.1987, 241:674-679
[126] DeWald M G, Moore G A, Sherman W B et al.Production of pineapple plants in vitro.Plant Cell Rep., 1988,7:535-537
[127] Dhingra O D, Sinclain J B.Basic Plant pathology Method.Boca Raton, Florida:CRC Press, 1985,122-126
[128] Ediba A I A, Hu C Y.In vitro morphogenetic responses and plant regeneration from pepper
(Capsicum annuum L.W.Early California Wonder) seedling explants.Plant cell Rep., 1993, 13(2) :107-110
[129] Egawa Y, and M Tanaga.Cytogenetical study of the interspecific hybrid between Capsicum annuum and C.baccatum.Jpn J.Breed, 1984, 36(1) :16-21
[130] Evens D A.In:A.Mizrahi (ed.) AllanR.Liss, New York, 1988,203-223
[131] Fadel F, Wenzel G.In vitro selection for tolerance to Fusarium graminearum in F1 micros pore populations of wheat.Plant breeding, 110(2) :89-95
[132] Fari M,Czako M.Relationship between position and morphogenetic response of pepper hypocotyls explants cultured in vitro.Scientia Hortic., 1981, 15:207-213
[133] Fari M, Tury Z, Ciilag F, et al.Comparative studies on in vitro regeneration of seedling explants in chilli pepper (Capsicum annuum L.).Acta Horti., 1990, (280) :131-134
[134] Gengenback B G and Green C E.Selection of T-cytoplasm maize callus cultures resistant to Helminthosporium Maydis race T pathotoxin.Crop science, 1975,150:645-647
[135] Grove J F, Hosken M.Biochemical Pharmacology, 1975, 24:959-962
[136] Grove J F.People M.Mycopathologia, 1980, 70:103-105
[137] Gunay A L, and Rao P S.In vitro plant regeneration from hypocotyls and cotyledon explants of red pepper (Capsicum).Plant Science Letters.1978, 11:365-372
[138] Hadi M Z, Bridgen M P.Somaclonal variation as a tool to develop pest resistant plants of Torenia Fournieri compacta Blue'.Plant Cell Tissue Organ Cult., 1996, 46:43-50
[139] Hammerschlag F A. Somaclonal variation. In: Hammerschlag F A and Litaz R E eds. Biotechnology of Perennial Fruit Crops.Wallingford:CAB International.1992, 35-55
[140] Harison G D et al.The use of protoplast in plant virus research.In:Use of tissue culture and protoplast in plant pathogen eds J.P.Helgeson et al.1983, 67-137
[141] Heimer D J, Krishnamuthi M, Nickell L G et al.Cell tissue culture and organ culture in sugarcance improvement.In:Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell.Tissue and organ culture. Reinert J and Y P S Bajai Eds, 1977:3-17
[142] Heinz D.J.Annl.Rep.Hawaiian Sugar Planters Assoc.Expt.Station, 1976, 9
[143] Heinz D.J.et al.In:Applied and Fundamental Aspects of Plant Cell.Tissue and organ culture. Reinert S., Baijaj Y.P.S.eds., Springer Verlag, Berlin, 1977, 3
[144] Heinz D.J.In:Induced Mutations in Vegetatively Propagated Plants, International Atomic Energy Agency, Vienna, 1973, 53
[145] Hwang S C.Variation in banana plants propagated through tissue cukture.J.Am.Soc.Hort Sci. 1985, 110:117-125
[146] Ishiik, et al.Solaniol, a Toxic Metabolite of Fusarium solani.Applied Microbiology, 1971, 22(4) :718-720
[147] Khodjaiova L T.Sterol content alterations in plants can be a source of a multiple resistance to the phyto sterol-dependent pests.Abstracts of German Russian Cooperation in Biotechnology Workshop IV.Sankt-petersburg:Science, 1996． 16
[148] Konzac C.F.In:Induced Mutations-a Tool in Plant Research, IAEA Vienna, 1981, 469
[149] Larkin P.T.In:Cereal Tissue Culture and Cell Culture, Bright S.W.J., Jones M.G.K.eds.,Martinus Nijhoff / Dr W.Junk Publishers, Dordrecht, 1985, 237
[150] Larkin P.T.Scowcroft W.R.Somaclonal variation-a novel source of variability from cell culture for plant improvement.TAG., 1981, 60:197-214
[151] Linacero R, Vazquez A M.Genetic analysis of chlorophyll-deficient somaclonal variations in rye.
Genome, 1992,35:981-984
[152] Lutova L A, Khodjaiova L T, Usoltseva M Y.Plant sterol are pivotal point in the plant-pathogen interactions. In: Abstract Book of the 8th International Congress Molecular Plant-Microbe Interactions.Knoxville, 1996． B:77
[153] Maliga P.In:Frontiers of Plant Tissue Culture, University of Calgary Press, Calgary, 1978, 381
[154] Miller J D.Deoxynivalenol and fusarium head blight resistance in spring cereals.Phytopath Z, 1985, 113:354-367
[155] Mirocha C J:In the Applied Mycology Fusarium (edited by M.O.Moss and J.E.Smith), Cambridge:Cambridge University Press, 1984:141-155
[156] Och Capsicum annuurn L.var.mathania.oa-Alejo N, and L Ireta-Moreno.Cultivar differences in shoot-forming capacity of hypocoty tissue of chilli pepper (Capsicum annuum L) cultured in vitro. Sci.Hortic.1990,42:21-28
[157] Phillips G C, and Hubstenberger J F.Organogenesis of in peeper cultures.Plant Cell, Tissue, Organ Cult, 1985,4:261-269
[158] R B Drysdale.In the Applied Mycology Fusarium (edited by M.O.Moss and J.E.Smith), Cambridge:Cambridge University Press, 1984:95-105
[159] Ramcharan C, Gonzalea A, Knausenbenger W J.Performance of plantains prodused from tissue culture plantains in St Croix US Virgin Islands.Proc the 3rd Meeting Intern Assoc Res Plantain and Banana Abidjian, 1985:36-39
[160] Reid D.A.In:Barly Genetics II (Nilan R.A.ed.),Washington State Univ.Press, Pullman, 1979,409
[161] Ronald, C.S.Mycotoxins and N-Nitroso compound;environmental risks, 1980, vol.II.P.40
[162] Rudolph K.In:Physiological Plant Pathology, Ed.By Heitefuss ea al.Springer-Verlag Press, Berlin and New York, 1976, 245-296
[163] Sanwal B D.Investigation on the metabolism of Fusarium lycopersici with the aid of radioactive carbon.Phytopath.Zeit., 1956, 25:333-384
[164] Saxena P K, R Gill et al.Isolation and culture of protoplasts of Capsicum annuum L.and their regeneration into plants flowering in vitro.Protoplasma, 1981, 108:357-360
[165] Scheffer, R.P., Yoder, O.C.Host-Specific Toxin and Selective Toxicity.In:Phytotoxins in Plant Disease, Academic Press, London, 1972, 251-272
[166] Sherf A F, Maonab A A.Vegetable Diseases and the in Control.2nd ed.New Yoek:John Wiley & Sons, 1986,507-508
[167] Shoemaker R C, Amberger K A,et al. Effect of 2,4-D acid concentrateion on somatic embryogenesis and heritable variation in soybean.In Vitro Cell Develop Biol, 1991, 27:84-88
[168] Simmonds J.Potential of anther culture in wheat breeding for Scab resistance.Cereal Res Commun, 1993,21(2-3) :141-148
[169] Skirvin R M, McPheeters K D.Norton M.Sources and frequency of somaclonal variation. HortiSci., 1994,29:1232-1237
[170] Snyder W C, Hansen H N.The species concept of in Fusarium.American Journal of Batany, 1940,27:64-67
[171] Sripichitt P et al.In vitro shoot-forming capacity of cotyledon explants in red pepper (Capsicum annuum L.cv.Yatsufusa), Jpn J.Breed, 1987, 37:133-142
[172] Szasz A, Nervo G, Fari M.Screening for in vitro shoot-forming capacity of seedling explants in bell pepper genotypes and efficient plant regeneration using thidiazuron.Plant Cell Rep., 1995,
14(10) :666-669
[173] Tuner W B.Fungal Metaboltes.London:Acdemic Press, 1971
[174] Ueno, Y et al.Toxicological approaches to the metabolites of Fusaria I.Screeing of toxic strains. Jap.J.Exp.Med.1971, 41:272-275
[175] Vuylsteke D, Swennen R, Wilson G et al.Phenotype variation among in vitro propagated plantain (Musa sp cv 'AAB').Sci.Hort, 1988, 36:79-88
[176] Wakasa K.Variation in the plants differentiated from the tissue culture of pineapple.Jap.J. Breeding, 1979,29:13-22
[177] Wang YZ and Miller JD.Effect of F.graminearum metabolites on wheat tissue in velation to fusarium head hight resistance.J Phytopathology, 1988,122
[178] Weiqel R, Wolf M, Hesemann CU.Mitochondrial DNA variation in plants regenerated from tissue culture.TAG., 1995, 91:1237-1241
[179] Winstead N N, and Walker J C.Toxic metabolites of the pathogen in relation to Fisarium resistance.Phytopath, 1954,44:159-166